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第1篇

關鍵詞硫胺素焦磷酸核酶開關； 增強綠色熒光蛋白； 基因表達調控； 熒光生物傳感器； 哺乳細胞

1引 言

核酶開關是近些年出現的一種人工基因調控開關。常見的核酶開關由錘頭狀核酶和適配體組成[1]。作為一種順式作用元件，在特異識別適配體的配體作用下，無需蛋白質輔助，即可通過調節自身裂解反應，調控mRNA的翻譯，已應用于多種細胞的基因調控[2～6]。迄今，隨著指數富集配基系統進化技術（SELEX）[7]技術發展，越來越多的適配體被篩選出來，能特異性地結合小分子、蛋白質、多肽、氨基酸、抗生素和金屬離子等各種配體[8～11]。相比于天然的核酶開關，人工核酶開關具有基因表達可控性、結構可組裝性、靶基因特異性等特點[12]。配體與適配體區的結合引起的構象變化可用來調控下游基因的表達，轉化成相關的化學信號，如報告基因的熒光變化等，可實現對配體在活細胞內的原位、可視化檢測。如今，合成生物學的發展及核開關在邏輯門中的運用，更推動了基于核酶開關的生物傳感器在真核細胞內的廣泛應用[13]。

硫胺素焦磷酸（Thiamine pyrophosphate，TPP） 是維生素B1在細胞內的主要活性形式，也是糖、脂肪酸和氨基酸氧化代謝中重要的輔助因子，對維持細胞正常代謝、細胞生長和增殖等發揮極其重要的作用。TPP 核酶開關是唯一同時存在于原核生物和真核生物中的天然核糖開關，在植物和真菌中較為常見[14～17]。其在真核細胞中主要作用于premRNA的內含子剪切，可實現對基因精確和有效的調控。無論是在真核中，還是原核生物中，TPP核酶開關對TPP都有高的特異性和親和力，而細胞中的其它組分或相似產物與核酶開關適配區結合能力很弱[18～20]，對核酶的活性影響很小。文獻[21～24]報道，將TPP適配體與天然核酶組裝成人工的TPP核酶開關，用于體外、原核細胞或藻類等細胞中調節靶基因的表達。目前，在哺乳細胞中運用的核酶開關適配體結構多限于茶堿、四環素、金屬離子等配體的適配體[25，26]。這些配體為細胞外源物，且常具有一定細胞毒性。而TPP是真核細胞的一種重要的代謝中間物，在細胞體內含量較低，人工建立的核酶開關用于調節哺乳細胞內的基因表達還未見報道。

迄今為止，原核生物中報道的人工TPP核酶開關有正調控和負調控兩種類型[21]，一般置于靶基因5′端。通過配體與適配體的作用，調控核酶剪切與否，釋放或封閉RBS序列以促進或關閉下游基因的表達[27]。真核生物中因無RBS 序列，核酶開關通過抑制mRNA剪切上調靶基因的表達，或激活mRNA剪切來抑制靶基因的表達[28，29]。目前，人工核酶開關的設計一般通過理性設計通信模塊元件序列，再整合到細菌或酵母mRNA中進行功能篩選與優化[30，31]。

2實驗部分

2.1儀器與試劑

Eppendorf mastercycler nexus PCR儀（德國Eppendorf公司）； Nikon ECLIPSE TI倒置熒光顯微鏡（日本Nikon公司）； BD Accuri C6流式細胞儀（美國BD公司）。

焦磷酸硫胺素（>95.0%，美國Sigma公司）； 茶堿（>99.0%，北京百靈威科技有限公司）； DpnI酶（50 U/μL，美國NEB公司）； T4 連接酶（5 U/μL，美國Invitrogen公司）； lipofectamine 2000轉染試劑、DMEM培養基（美國Invitrogen公司）； 小牛血清（美國Gibco公司）。

2.2哺乳細胞中TPP核酶開關質粒的構建

將來源于Schistosoma mansonii錘頭狀核酶 （HHR） 序列插入pEGFPN1載體EGFP基因的3′ UTR 區。 pEGFPN1質粒為模板，5′ 重疊延伸PCR方法構建無TPP適配體區的pEGFPHHR。PCR反應： 94℃預變性2 min，94℃ 30 s， 60℃ 30 s， 72℃ 1 min， 25個循環； 72℃延伸10 min。PCR反應體系： 5 μL 10 × Phusion DNA polymerase buffer， 4 μL 10 mmol/L dNTP， 2 μL 10 μmol/L primer F， 2 μL 10 μmol/L primer R， 1 μL Template， 0.25 μL Phusion DNA polymerase； 加ddH2O至50 μL。PCR產物用乙醇回收，DpnI酶37℃消化PCR產物中過量的質粒模板1 h，用乙醇回收產物，T4 DNA ligase連接轉化至感受態細胞，后涂布至含有相應抗性的LB平板中37℃過夜培養。挑取單克隆培養，提取質粒并送上海生工生物技術公司測序，GenBank中BLAST序列比對。測序成功產物作為模板用于后續帶有TPP適配區on/off型核酶開關的構建，其構建方法同上，其序列與相關引物見表1。所有寡核苷酸及引物由上海生工生物技術公司合成。

2.3哺乳細胞的培養及瞬時轉染

HEK293細胞于添加10% 小牛血清的DMEM中，37℃， 5% CO2培養。轉染前一天，以5×104/孔密度，添加0.5 mL DMEM/孔鋪于24孔板。根據轉染條件，以每孔1 μg pEGFPTPPHHR質粒與2 μL lipofectamine 2000轉染細胞，pEGFPN1與pEGFPHHR分別為陰性與陽性對照，4 h后換新鮮培養基并添加不同梯度濃度（0～150 μmol/L）的TPP或茶堿（Theophylline）。

2.4轉染后細胞內EGFP表達的熒光顯微鏡觀察與流式細胞儀分析

細胞轉染48 h后， PBS洗滌，熒光顯微鏡下以488 nm 激發波長，515～545 nm發射波長觀察EGFP

3結果與討論

3.1pEGFPTPPHHRON/OFF質粒的構建

人工TPP核酶開關有正調控和負調控兩種類型，無論對于原核生物或真核生物，人工核酶開關上調或抑制表達的關鍵取決于連接適配體結構域與核酶結構域的通信模塊，即連接適配體區（Stem Ⅲ）與錘頭狀核酶（HHR）（圖2A）莖環結構（StemⅡ）之間的寡核苷酸序列，故TPP適配區與HHR核酶的接頭序列是決定核酶開關是“Switch on”還是“Switch off”的關鍵。在負調控（Switch off）開關中，無配體時，錘頭狀核酶（HHR）的活性結構得不到維持，從而抑制HHR核酶的剪切。而TPP配體的結合，可引起核酶開關莖環結構Stem Ⅱ與Stem Ⅰ 之間活性結構的穩定，剪切發生。反之，正調控（Switch on）結構具有初始穩定的HHR剪切結構，而TPP的結合反而破壞了HHR的活性結構，從而抑制剪切的發生[21，23]。根據原核生物中優化的連接適配體與核酶的6個寡核苷酸的不同序列，共構建了3種Off（pEGFPTPPHHRoff1，2，3）開關及兩種On（pEGFPTPPHHRon1，2）開關的質粒（圖2B）（后續以TPPHHRon/off簡稱）。

為保證其在真核生物中的調節活性，所有開關設計均插入在目的基因EGFP 3′ UTR區。由于待插入的HHR和TPP適配體片段位于EGFP基因下游，缺少合適的限制性內切酶位點，且序列較短，僅約120～140 bp。傳統的PCR酶切連接方式的回收效率較低， 影響后續重組載體的構建，故本實驗中利用Overlap extension PCR cloning[32]將核酶開關片段插入質粒中的方法更為高效準確。設計兩條5′ 末端磷酸化的上下游引物，引物的一部分為帶插入的序列，另一部分分別和質粒插入位置的下游和上游互補，以模板質粒擴增全長。

3.2不同TPP濃度下HEK293細胞內EGFP基因表達分析

首先通過熒光@微鏡觀察瞬時轉染48 h后HEK293細胞內EGFP報告基因表達，結果表明：相比陰性對照pEGFPN1轉染細胞的EGFP高表達，陽性對照pEGFPHHR質粒轉染的細胞熒光明顯降低，表現出良好的核酶剪切功能，但無TPP濃度依耐性 （圖3A）。而隨著TPP濃度升高TPPHHRon1，2轉染細胞的綠色熒光的強度有著明顯的增強趨勢； 反之，而在構建的3個off型開關轉染細胞中，只有TPPHHRoff1隨著的TPP濃度的升高，EGFP表達明顯下降（圖3B）。

但TPPHHRoff2，3均未見熒光強度的降低，其強度接近于陰性對照， 且無TPP濃度依賴性。這可能是因為接頭序列的不完全配對造成了mRNA二級構象的不匹配[23]，而這種改變在哺乳細胞中會受到更多因素的影響，核酶更難以發揮正確的剪切功能[31]。

為進一步考察不同TPP濃度對EGFP表達的影響，利用流式細胞儀對上述EGFP表達量有改變的轉染細胞株平均熒光強度進行定量分析（圖4）。相比陰性對照，pEGFPHHR轉染細胞株熒光強度降低近80%，表明此構建體系中HHR核酶在哺乳細胞中保持其強勁的剪切作用。在構建的兩個激活型開關中，TPPHHRon1在TPP濃度達50 μmol/L 時熒光表達明顯升高； 150 μmol/L 時，平均熒光強度可增大約3.1倍，接近于報道中作用于原核細胞的Turn on功能[21]，另一TPPHHRon2熒光強度雖有升高，但開關調節功能較微弱，150 μmol/L的TPP調節只增加1.8倍的表達。而在構建的TPPHHRoff1中，TPP濃度為100 μmol/L 時，平均熒光強度降低了2.3倍，之后隨配體濃度繼續增加（150 μmol/L），其對EGFP表達的進一步抑制未有明顯效果。發現3種對TPP有響應的核酶開關，其對TPP敏感濃度約為50～100 μmol/L，實驗中曾將TPP濃度加大到500 μmol/L，但其在各種轉染細胞株中并未見明顯作用效果。相對于以往報道中茶堿在哺乳細胞中調節濃度均為1～10 mmol/L， 所構建的TPP核酶開關對TPP底物作用的敏感性大大提高。但此結果也證實了雖然核酶開關在原核生物或低等真核生物細胞中有良好的調控作用，但其結果并不完全適用于哺乳細胞。在很多報道中， 原核生物系統中的核酶開關可達到1.2～10倍的調節功能[23，30]，雖遠小于體外100～10000倍的調節幅度[22]，但在真核哺乳細胞中的調節效果更低，且調控能力亦會因轉基因或宿主細胞種類的不同而有所改變[31]。相比于原核生物相對簡單的轉錄翻譯機制，其核酶開關在真核細胞中mRNA二級結構的正確形成常會受到更多轉錄翻譯等相關因子的影響，更增加了其調節的難度和不確定性。

為了檢測TPP核酶開關的特異性，在平行樣本中均加入了茶堿。實驗表明，茶堿的添加并不能激活核酶開關發生構象變化，從而影響報告基因綠色熒光蛋白的表達。結果表明，這些原本適用于原核生物的核酶開關對適配體較高的特異性在哺乳細胞內仍能得到較好的保留。

4Y 論

研究了原核生物篩選的基于TPP適配體的兩種類型的核酶開關，通過TPP配體與人工核酶的變構作用，激活或抑制核酶的剪切，實現了在哺乳細胞中調節報告基因綠色熒光蛋白（EGFP）的表達。此方法可用于間接檢測哺乳細胞內微環境中的TPP濃度，這種基于變構活性來調節下游報告基因活性的策略，利于通過熒光檢測用于哺乳活細胞內代謝物或因子的無標記、無損傷、可視、高效的檢測。雖然相對于體外檢測，這種細胞內原位檢測方法所需的本底濃度水平較高（umol/L），但今后隨著合成生物學中基因表達的級聯放大技術的發展和邏輯門等方法的結合運用， 這種基于核酶開關的生物傳感器將在提高哺乳細胞檢測敏感性和運用廣泛性方面具有極大的潛力[33]。